| Authors: | Serge Auger, Jean Lacoursière, and Pierre Picard |
|---|---|
| Themes: | Alto rendimento, Cabelo, Luxon-MS/MS |
Como a raiz do cabelo é vascularizada durante o seu crescimento, as drogas ilícitas presentes na corrente sanguínea podem entrar na haste capilar através da raiz onde serão sequestradas. Portanto, o uso de drogas ilícitas pode ser revelado por meio da análise de uma pequena amostra de cabelo. Para aumentar o rendimento da análise de amostras de cabelo, o Luxon Ion Source® acoplado à espectrometria de massa em tandem (MS/MS) foi utilizado para a identificação e quantificação de drogas de abuso.
Para este projeto, propomos realizar um método de extração genérico para análise de drogas ilícitas no cabelo. A triagem utilizando o Luxon acoplado a um espectrômetro de massa (Luxon-MS/MS) foi escolhida como uma técnica analítica rápida.
O Luxon Ion Source® (Figura 1) é a segunda geração de introdução de amostra e fonte de ionização baseada na tecnologia LDTD® para espectrometria de massa. Luxon Ion Source® usa laser de diodo acoplado a fibra (Figura 2) para obter uniformidade térmica incomparável, proporcionando mais precisão, exatidão e velocidade. O processo começa com amostras secas que são rapidamente evaporadas usando calor indireto. As moléculas neutras termicamente dessorvidas são transportadas para uma região de descarga de corona. A protonação de alta eficiência e uma forte resistência à saturação iônica caracterizam esse tipo de ionização e é o resultado da ausência de solvente e fase móvel. Este processo de dessorção térmica produz sinal de íons moleculares de alta intensidade em menos de 1 segundo amostra a amostra e permite trabalhar com volumes muito pequenos.

Figure 1 – Luxon Ion Source®

Figure 2 – Schematic of the Luxon Ionization Source
Uma pré-lavagem do cabelo foi realizada para remover contaminantes externos utilizando metanol.
Modelo: Phytronix, Luxon S-960
Gás carreador: 6 L/min (ar)
Padrão de Laser:
Modelo: Sistema Q-Trap® 5500, Sciex
Ionização: APCI
| Drogas | Transição | CE |
|---|---|---|
| Anfetamina | 136 → 119 | 12 |
| Anfetamina-D11 | 147 → 98 | 27 |
| Metanfetamina | 150 → 119 | 15 |
| Metanfetamina-D11 | 161 → 97 | 27 |
| MDA | 180 → 163 | 20 |
| MDMA | 194 → 163 | 12 |
| MDMA-D5 | 199 → 165 | 12 |
| MDEA | 208 → 163 | 12 |
| Dietilpropiona | 206 → 100 | 35 |
| Dietilpropiona-D10 | 216 → 110 | 35 |
| Mazindol | 285 → 242 | 35 |
| Mazindol-D4 | 289 → 242 | 35 |
| Morfina | 286 → 152 | 75 |
| Morfina-D6 | 292 → 152 | 75 |
| Codeína | 300 → 152 | 75 |
| Codeína-D6 | 306 → 152 | 75 |
| Cocaína | 304 → 182 | 25 |
| Cocaína-D3 | 307 → 185 | 25 |
| 6-Monoacetilmorfina | 328 → 165 | 50 |
| 6-Monoacetilmorfina-D6 | 334 → 165 | 50 |
| Drogas | Transição | CE |
|---|---|---|
| THC | 313 → 245 | -35 |
| THC-D3 | 316 → 248 | -35 |
Amostras cravadas em torno do ponto de decisão e soluções em branco foram utilizadas para validar a precisão do método. Cada concentração não deveria exceder 20% CV e a concentração média ± 2 vezes o desvio padrão (DP) não deveria se sobrepor a outras concentrações no ponto de decisão. A área do pico contra a razão PI foi utilizada para normalizar o sinal. As extrações replicadas foram depositadas em uma placa LazWell™ e secas antes da análise. Nenhuma sobreposição no ponto de decisão foi observada para todas as curvas e o %CV ficou abaixo de 15% para experimentos dentro da corrida. Os resultados usando a sobreposição de ± 2 DP foram plotados. A Figura 3 mostra os resultados do teste dentro da corrida para anfetamina. Resultados semelhantes foram obtidos para as outras drogas.
[AN-1903_FIGURE_3]
Figura 3 – Curvas de precisão dentro da corrida para anfetamina
Para o experimento de precisão entre corridas, cada conjunto de amostras fortificadas foram analisadas em triplicata em cinco dias diferentes. A Tabela 3 mostra os resultados de precisão entre corridas.
| Média (pg/mg) |
Média – 2DP | Média + 2DP | Média (pg/mg) |
Média – 2DP | Média + 2DP | ||
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Anfetamina (pg/mg) | Codeína (pg/mg) | ||||||
| 100 | 102,2 | 90,9 | 113,5 | 100 | 101,7 | 82,9 | 120,4 |
| 200 | 198,0 | 170,3 | 225,7 | 200 | 196,8 | 170,1 | 223,5 |
| 400 | 390,7 | 351,8 | 429,7 | 400 | 397,9 | 348,3 | 447,5 |
| Metanfetamina (pg/mg) | Cocaína (pg/mg) | ||||||
| 100 | 104,8 | 96,9 | 112,7 | 250 | 261,5 | 228,0 | 295,1 |
| 200 | 193,9 | 172,5 | 215,3 | 500 | 492,9 | 457,9 | 527,8 |
| 400 | 384,7 | 362,1 | 407,3 | 1000 | 960,4 | 856,9 | 1063,9 |
| MDA (pg/mg) | THC (pg/mg) | ||||||
| 100 | 105,3 | 84,0 | 126,5 | 25 | 22,7 | 14,8 | 30,6 |
| 200 | 192,8 | 161,5 | 224,0 | 50 | 52,1 | 45,3 | 58,9 |
| 400 | 390,1 | 342,5 | 437,8 | 100 | 103,6 | 90,3 | 116,8 |
| MDMA (pg/mg) | 6-MAM (pg/mg) | ||||||
| 100 | 103,3 | 89,9 | 116,7 | 100 | 103,3 | 93,9 | 112,8 |
| 200 | 196,4 | 179,8 | 212,9 | 200 | 200,9 | 183,3 | 218,6 |
| 400 | 389,2 | 361,1 | 417,3 | 400 | 378,0 | 337,2 | 418,8 |
| MDEA (pg/mg) | Dietilpropiona(pg/mg) | ||||||
| 100 | 102,8 | 87,4 | 118,2 | 100 | 101,8 | 77,3 | 126,4 |
| 200 | 200,6 | 161,0 | 240,2 | 200 | 196,7 | 168,3 | 225,1 |
| 400 | 386,9 | 361,4 | 412,3 | 400 | 413,2 | 341,6 | 484,8 |
| Morfina (pg/mg) | Mazindol (pg/mg) | ||||||
| 100 | 103,4 | 80,3 | 126,5 | 100 | 94,0 | 78,5 | 109,4 |
| 200 | 203,7 | 151,3 | 256,1 | 200 | 226,9 | 163,7 | 290,2 |
| 400 | 374,3 | 296,0 | 452,5 | 400 | 397,6 | 362,6 | 432,7 |
Após a extração, os extratos de amostra foram mantidos a 4°C em recipientes fechados. Após 4 dias, os extratos de amostra foram colocados em uma placa LazWell™ e analisados. A precisão no padrão de corte de 50% está relatada na Tabela 4 para Anfetamina. Todos os resultados estão dentro do intervalo aceitável (critério %CV ≤20%) para 4 dias a 4°C. Resultados semelhantes foram obtidos para as outras drogas.
As amostras extraídas foram colocadas em uma placa LazWell™ e mantidas à temperatura ambiente antes da análise. A precisão no padrão de corte de 50% está relatada na Tabela 4 para Anfetamina. Todos os resultados estão dentro do intervalo aceitável (critério %CV ≤20%) para 2 horas à temperatura ambiente. Resultados semelhantes foram obtidos para as outras drogas.
| Parâmetros | Estabilidade seca | Estabilidade úmida |
|---|---|---|
| Tempo | 2 horas | 4 dias |
| Temp. (°C) | 22 | 4 |
| Conc. (pg/mg) | 100 | 100 |
| N | 6 | 6 |
| Média (pg/mg) | 101,4 | 102,1 |
| %CV | 3,6 | 3,9 |
Espécimes de amostra foram extraídas e analisadas utilizando um método Luxon-MS/MS. Após uma dessorção rápida, amostras, amostras fortificadas e em branco foram avaliadas usando a razão da área de pico. Todas as amostras com uma concentração superior ao padrão de corte foram classificadas como amostras positivas para drogas. A Tabela 5 mostra os resultados da triagem e confirmação das amostras. Todas as amostras foram analisadas utilizando o método de confirmação LC-MS/MS para validação cruzada. Não foram observados falsos positivos ou falsos negativos utilizando o método de triagem Luxon-MS/MS.
Luxon Ion Source® combinado com o sistema de espectrometria de massa Q-Trap 5500 permite a triagem ultrarrápida (8 segundos por amostra) de drogas na amostra de cabelo utilizando uma preparação de amostra genérica.
APCI: ionização química de pressão atmosférica
CE: energia de colisão
Conc: concentração
N: número de amostras
%CV: % do coeficiente de variação
%Nom: % nominal